affections cutanées | TRAMIL

	Allium sativum (dans les territoires avec usage significatif TRAMIL) Barbade : garlic République Dominicaine : ajo Guatemala : ajo Haïti : lay Sainte-Lucie : lay Guadeloupe : ail Guadeloupe : lay Usages significatifs TRAMIL bulbe pilé, bain et friction¹	Recommandations Préparation et posologie Références	Selon l’information disponible : L’emploi contre affections cutanées, prurit, candidose, mal de dent, douleur d’oreille est classé REC, basé sur l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée. Toute application locale doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène pour empêcher la contamination ou une infection surajoutée. Si l’état du patient se détériore ou que les affections cutanées, le prurit, la candidose persistent plus de 5 jours chez l'adulte et 3 jours chez l'enfant, ou que le mal de dent plus de 3 jours ou que les douleurs d’oreille persistent pendant plus de 2 jours, consulter un médecin. Les douleurs d’oreille pouvant être dues à une otite médiane ou interne, il est recommandé de consulter d’abord un médecin. Son emploi est contre-indiqué en présence de sécrétions à l’intérieur de l’oreille et/ou une éventuelle perforation du tympan. L’emploi contre la fièvre est classé REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, de validation et l’information scientifique publiée. Si l’état du patient se détériore ou que la fièvre persiste pendant plus de 2 jours, consulter un médecin. Nous ne disposons pas d’un modèle d’expérimentation adéquat pour valider la mala sangre (stress), qui puisse valider cet emploi traditionnel. L’emploi contre les parasites intestinaux, les lourdeurs d’estomac, les nausées et la flatulence est classé REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée. L’usage du bulbe peut produire des réactions d’hypersensibilité par voie orale et topique avec des effets anaphylactiques⁸. Il possède un effet anticoagulant et il est conseillé de suspendre son utilisation avant toute chirurgie ou intervention odontologique^8-9. Il peut causer une gastroentérite¹⁰ et provoquer un reflux oesophagique¹⁰. Son emploi est contre-indiqué en cas d’hyperthyroïdisme¹¹, en cas d’inflammation stomacale aigüe ou chronique ou en cas d’une irritation significative ou d’inflammation d’autres muqueuses¹⁰. Il est également contre indiqué pour les personnes ayant un traitement hypoglycémiant (oral ou insuline)^12-13, anticholestérolémique, antihypertensif^8,10, anticoagulant^8-14, anti-inflammatoire non stéroïdien (ibuprofène, naproxène) et avec des plantes ou complément alimentaire tel que le Ginkgo biloba à cause du risque d’hémorragie⁸. L’emploi du bulbe interagit avec des médicaments anticholestérolémiques (lovastatine ou autres «statines» inhibiteurs de l’HMGCoA réductase) en accroissant leur effet¹⁴ et en diminuant la concentration plasmatique des antirétroviraux¹³. Le bulbe par voie orale peut provoquer l’irritation des voies urinaires sur des personnes présentant une sensibilité spécifique¹⁵. L’efficacité du médicament saquinavir, utilisée dans le traitement du VIH, peut être réduit si l’on consomme de l’ail¹⁶. Son influence sur d’autres médicaments antiviraux comme le ritonavir¹⁷ n’a pas été démontrée ni non plus l’altération des quantités de médicaments métabolisés par le système enzymatique CYP450 du foie¹⁸. Plusieurs études ont suggéré qu’il peut causer des contractions utérines^8,10. Ne pas administrer pendant la grossesse car susceptible de causer un avortement, en période d’allaitement ni à des enfants de moins de 3 ans.		Le bulbe d’Allium sativum constitue un condiment de consommation humaine relativement étendue. Le bulbe d’ail à des fins médicinales devrait être consommé avec les repas pour éviter d’éventuels problèmes grastro-intestinaux⁶⁸. Contre fièvre, parasites intestinaux, lourdeurs d’estomac, nausée ou flatulence : Préparer une décoction avec 1-2,5 gousses (2 à 5 grammes) d’ail frais⁶⁸ ou 0,4-1,2 grammes d’ail en poudre sèche⁶⁸ dans 1 tasse (250 millilitres) d’eau, faire bouillir pendant 10 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3 fois par jour. Contre les affections cutanées, le prurit, la candidose, le mal de dent ou les douleurs d’oreille : Peler et laver correctement 1-2,5 gousses (2-5 grammes) d’ail frais, les piler et appliquer sur la zone affectée 2 fois par jour. Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.	1 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d’Entraide SOE, Port au Prince, Haïti. 2 GERMOSÉN-ROBINEAU L, GERÓNIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana. 3 GIRÓN L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala. 4 WENIGER B, 1987-88 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana. 5 JEAN-PIERRE L, 1988 TRAMIL survey. St. Lucia National Herbarium, Castries, St Lucia. 6 FAUJOUR A, MURREY D, CHELTENHAM-CORBIN B, CARRINGTON S, 2003 TRAMIL survey. enda-caribbean, IICA & UAG, Saint Thomas, Barbados. 7 BOULOGNE I, 2008 Enquête TRAMIL, Les Saintes, UAG, Guadeloupe (FWI). 8 NATURAL STANDARD, 2010 Garlic (Allium sativum L.). Foods, Herbs & Supplements. www.naturalstandard.com/monographs/herbssupplements/garlic. Last updated 5/17/2010. 9 GRUENWALD J, BRENDLER T, JAENICKE C, 2004 Physicians’ Desk Reference for Herbal Medicines, Third Edition. Montvale, NJ, USA: Thomson Healthcare, Inc. 988pp. 10 BRINKER FND, 2001 Herb contraindications and drug interactions. 3° edition. Sandy, Oregon, USA: Eclectic Medical Publications. 11 ARTECHI A (Ed.), 1998 Fitoterapia Vademécum de prescripción de Plantas Medicinales. Barcelona, España: Masson. p63. 12 ALONSO JR, 1998 Tratado de fitomedicina. Bases clínicas et farmacológicas. Buenos Aires, Argentina: Ed. ISIS S.R.L. p208. 13 QUILEZ AM, GARCÍA D, SÁENZ T, 2009 Uso racional de medicamentos a base de plantas. Guía de interacciones entre fitomedicamentos et fármacos de síntesis. Sevilla, España: 1a Edición Fundación Farmacéutica Avenzoar. 14 MEDLINE PLUS, 2009 Ajo (Allium sativum L.). Biblioteca Nacional de Medecina de EE.UU et los Institutos Nacionales de la Salud. URL: www.nlm.nih.gov/medlineplus/spanish/druginfo/natural/patient-garlic.html.... 15 CAPORASO N, SMITH S, ENG R, 1983 Antifungal activity in human urine and serum after ingestion of garlic. Antimicob Agents Chemother 23(5):700-702. 16 PISCITELLI SC, BURSTEIN AH, WELDEN N, GALLICANO KD, FALLOON J, 2002 The effect of garlic supplements on the pharmacokinetics of saquinavir. Clinical infectious diseases 34(2):234-238. 17 GALLICANO K, FOSTER B, CHOUDHRI S, 2003 Effect of short-term administration of garlic supplements on single-dose ritonavir pharmacokinetics in healthy volunteers. British J of Clinical Pharmacology 55(2):199-202. 18 MARKOWITZ JS, DEVANE CL, CHAVIN KD, TAYLOR RM, RUAN Y, DONOVAN JL, 2003 Effects of garlic (Allium sativum L.) supplementation on cytochrome P450 2D6 and 3A4 activity in healthy volunteers. Clin Pharmacol Ther 74(2):170-177. 19 AL-NAGDY SA, ABDEL-RAHMAN MO, HEIBA HI, 1988 Evidence for some prostaglandins in Allium sativum extracts. Phytother Res 2:4196-4197. 20 ROLLERI F, 1943 Occurrence of nicotinic acid and nicotinamide in curative plants. Arch Pharm (Weinheim) 281:118. 21 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Ratón, USA: CRC Press. p13. 22 DR. DUKE’S PHYTOCHEMICAL AND ETHNOBOTANICAL DATABASES, 2009 www.ars-grin.gov/duke/ 23 KOCH HP, JAGER W, GROH U, HOVIE JE, PLANK G, SEDLAK U, PRAZNIK W, 1993 Carbohydrates from garlic bulbs (Allium sativum L.) as inhibitors of adenosine deaminase enzyme activity. Phytother Res 7(5):387-389. 24 BAUMGARTNER S, DAX TG, PRAZNIK W, FALK H, 2000 Characterisation of the high-molecular weight fructan isolated from garlic (Allium sativum L.). Carbohydr Res 328(2):177-183. 25 RAKHIMBAEV IR, OL’SHANSKAYA RV, 1981 Preliminary identification of natural gibberellins of garlic. Izv Akad Nauk Kaz Ssr Ser Biol 2:17-22. 26 INAGAKI M, HARADA Y, YAMADA K, ISOBE R, HIGUCHI R, MATSUURA H, ITAKURA Y, 1998 Isolation and structure determination of cerebrosides from garlic, the bulbs of Allium sativum L. Chem Pharm Bull 46(7):1153-1156. 27 SENDL A, ELBL G, STEINKE B, REDL K, BREU W, WAGNER H, 1992 Comparative pharmacological investigations of Allium ursinum and Allium sativum. Planta Med 58(1):1-7. 28 MOCHIZUKI E, YAMAMOTO T, KOMIYAMA Y, NAKAZAWA H, 1998 Identification of Allium products using flame photometric detection gas chromatography and distribution patterns of volatile sulfur compounds. J Agr Food Chem 46(12):5170-5176. 29 UEDA Y, SAKAGUCHI M, HIRAYAMA K, MIYAJIMA R, KIMIZUKA A, 1990 Characteristic flavor constituents in water extract of garlic. Agr Biol Chem 54(1):163-169. 30 LAWSON LD, WOOD SG, HUGHES BG, 1991 hplc analysis of allicin and other thiosulfinates in garlic clove homogenates. Planta Med 57(3):263-270. 31 MUTSCH-ECKNER M, ERDELMEIER CAJ, STICHER O, REUTER HD, 1993 A novel amino acid glycoside and three amino acids from Allium sativum. J Nat Prod 56(6):864-869. 32 PENG JP, CHEN H, QIAO YQ, MA LR, NARUI T, SUZUKI H, OKUYAMA T, KOBAYASHI H, 1996 Two new steroidal saponins from Allium sativum and their inhibitory effects on blood coagulability. Yao Hsueh Hsueh Pao 31(8):607-612. 33 MATSUURA H, USHIROGUCHI T, ITAKURA Y, FUWA T, 1989 Further studies on steroidal glycosides from bulbs, roots and leaves of Allium sativum L. Chem Pharm Bull 37(10):2741-2743. 34 VICTORIA MdC, MORÓN FJ, MARTÍNEZ I, BRITO G, FUENTES V, 2011 Efecto antipirético de la decocción 30% de bulbo fresco machacado de Allium sativum (ajo) en ratas. Informe TRAMIL. Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, Laboratorio Central de Farmacología, La Habana, Cuba. 35 SHARMA V, SETHI M, KUMAR A, RAROTRA JR, 1977 Antibacterial property of Allium sativum in vivo & in vitro studies. Indian J Exp Biol 15:466. 36 SHAMS M, SHOKOOHAMIRI MR, AMIRRAJAB N, MOGHADASI B, GHAJARI A, ZEINI F, SADEGHI G, RAZZAGHI M, 2006 In vitro antifungal activities of Allium cepa, Allium sativum and ketoconazole against some pathogenic yeasts and dermatophytes. Fitoterapia 77:321-323. 37 MOLINA NM, 1992 Actividad antimicrobiana de extractos de Allium sativum. Evaluación preclínica, farmacológica et toxicológica (Tesis de graduación). Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 38 EL-TANBOULY ND, ABDEL-MEGID RM, 1994 HPLC determination of alliin in garlic and garlic products and their antimicrobal activity. Zagazig J Pharm Sci 3(3A):120-124. 39 CÁCERES A, GIRÓN LM, ALVARADO SR, TORRES MF, 1987 Screening of antimicrobial activity of plants popularly used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal diseases. J Ethnopharmacol 20(3):223-237. 40 KABELIK J, 1970 Antimicrobial properties of garlic. Pharmazie 25(4):266-270. 41 ADETUMBI M, JAVOR GT, LAU BH, 1986 Allium sativum (garlic) inhibits lipid synthesis by Candida albicans. Antimicrob Agents Chemother 30(3):499-501. 42 APPLETON JA, TANSEY MR, 1975 Inhibition of growth of zoopathogenic fungi by garlic extract. Mycologia 67:882-885. 43 PLODDEE A, PALAKORNKOL R, 1977 Antifungal activity of garlic. Undergraduate Special Project Report 1977:23. 44 DELAHA EC, GARAGUSI VF, 1985 Inhibition of mycobacteria by garlic extract (Allium sativum ). Antimicrob Agents Chemother 27(4):485-486. 45 FERNÁNDEZ EJ, 1995 Efecto de dos formulaciones hidroalcohólicas de Allium sativum en el tratamiento de patients con dermatofitosis (Tesis de especialidad en farmacología). Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 46 PRASAD G, SHARMA VD, RAO VN, KUMAR A, 1983 Efficacy of garlic (Allium sativum) treatment against dermatophytosis in man and animals. Indian Vet Med J 7(3):161-163. 47 MARTÍNEZ CROVETTO R, 1981 Plantas utilizadas en medicina en el Noroeste de Corrientes. Miscelanea (Fund Miguel Lillo) 69:7-139. 48 ABDEL-GHAFFAR F, SEMMLER M, AL-RASHEID KA, STRASSEN B, FISCHER K, AKSU G, KLIMPEL S, MEHLHORN H, 2011 The effects of different plant extracts on intestinal cestodes and on trematodes. Parasitol Res 108(4):979-984. 49 SOFFAR SA, MOKHTAR GM, 1991 Evaluation of the antiparasitic effect of aqueous garlic (Allium sativum) extract in Hymenolepiasis nana and giardiasis. J Egypt Soc Parasitol 21(2):497-502. 50 NAHED HA, HODA AT, YOMNA IM, 2009 Effects of garlic on albino mice experimentally infected with Schistosoma mansoni: a parasitological and ultrastructural study. Trop Biomed 26(1):40-50. 51 GAAFAR MR, 2012 Efficacy of Allium sativum (garlic) against experimental cryptosporidiosis, Alexandria J of Medicine 48:59–66. 52 DAMRAU F, FERGUSON E, 1949 The modus vivendi of carminative. The therapeutic value of garlic in functional gastrointestinal disorders. Rev Med J 2:757-758. 53 DEBLASI V, DEBROT S, MENOUD A, GENDRE L, SCHOWING J, 1990 Amoebicidal effect of essential oils in vitro. J Toxicol Clin Exp 10:361-373. 54 MARTÍNEZ MJ, MOREJÓN Z, LÓPEZ M, BOUCOURT E, FUENTES V, MORÓN F, 2005 Irritabilidad dérmica primaria de bulbo fresco machacado de Allium sativum L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, Cerro, C. Habana, Cuba. 55 MARTÍNEZ MJ, MOREJÓN Z, LÓPEZ M, BOUCOURT E, FUENTES V, MORÓN F, 2005 Clases tóxicas agudas (CTA) de una decocción de bulbo de Allium sativum L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 56 GARNIER G, BEZANGER-BEAUQUESNE L, 1961 Ressources médicinales de la flore française. Paris, France: Ed. Vigot Frères. 57 BOJS G, SVENSSON A, 1988 Contact allergy to garlic used for wound healing. Contact Derm 18(3):179-181. 58 PAPAGEORGION C, CORBET JP, BRANDAO FM, PECEGUEIRO M, BENEZIA C, 1983. Allergic contact dermatitis to Garlic (Allium sativum L.). Identification of the allergens: the role of mono-di and trisulfides present in garlic. A comparative study in man and animal (guinea pig). Arch Dermatol Res 275(4):229-234. 59 KANEZAWA A, NAKAGAWA S, SUMIYOSHI H, MASAMOTO K, HARADA H, NAKAGAMI S, DATE S, YOKOTA A, NISHIKAWA M, FUWA T, 1984 General toxicity tests of garlic extract preparation contained vitamins (Kyoleopin). Pharmacometrics 27(5):909-929. 60 SUMIYOSHI H, KANEZAWA A, MASAMOTO K, HARADA H, NAKAGAMI S, YOKOTA A, NISHIKAWA M, NAKAGAWA S, 1984 Chronic toxicity test of garlic extract in rats. J Toxicol Sci 9(1):61-75. 61 AL-BEKAIRI AM, SHAH AH, QURESHI S, 1990 Effect of Allium sativum on epididymal spermatozoa, estradiol-treated mice and general toxicity. J Ethnopharmacol 29(2):117-125. 62 HUH K, PARK JM, LEE S-IL, 1985 Effect of garlic on the therapeutic glutathione S-transferase and glutathione peroxidase activity in rat. Arch Pharm Res 8(4):197-203. 63 SITPRIJA S, PLENGVIDHYA C, KANGKAYA V, BHUVAPANICH S, TUNKAYOON M, 1987 Garlic and diabetes mellitus phase III clinical trial. J Med Assoc 70(2):223-227. 64 MC CRINDLE BW, HELDEN E, CONNER WT, 1998 Garlic extract therapy in children with hypercholesterolemia. Arch Pediatr Adolesc Med 152(11):1089-1094. 65 CHUTANI SK, BORDIA A, 1981 The effect of fried versus raw garlic on fibrinolytic activity in man. Therosclerosis 38:417-421. 66 SHARAF A, 1969 Food plant as a possible factor in fertility contrôle. Qual Plant MaterVeg 17:153. 67 CHAUHAN LS, GARG J, BEDI HK, GUPTA RC, BOMB BS, AGARWAL MP, 1982 Effect of onion, garlic and clofibrate on coagulation and fibrinolytic activity of blood in cholesterol fed rabbits. Indian Med J 76(10):126-127. 68 WHO, 2004 Allium sativum. WHO Monographs on selected medicinal plants. Volume 1. Bulbis Alii Sativi. Ginebra, Suiza, Oct.28,2004. URL: www.who.int/medicines/library/trm/medicinalplants/monograph_volume_one.s...
	Gossypium barbadense (dans les territoires avec usage significatif TRAMIL) Haïti : koton Honduras : hoja de algodón (watmo wajaya) Usages significatifs TRAMIL feuille froissée, bain et friction¹	Recommandations Préparation et posologie Références	Selon l’information disponible : L'emploi contre les affections cutanées, le prurit et les saignements, est classé REC sur la base de l'usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité. Toute application topique doit obéir à de strictes mesures d’hygiène pour empêcher la contamination ou une infection surajoutée. Si l'état du patient se détériore ou que l'affection cutanée persiste plus de 5 jours, consulter un médecin. L'emploi contre les douleurs abdominales et les gaz est classé REC sur la base de l'usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, de validation et l’information scientifique publiée disponible. Si l'état du patient se détériore ou que la douleur abdominale persiste plus de 3 jours, consulter un médecin. Ne pas employer avec des femmes enceintes, allaitantes, ni avec des enfants de moins de 12 ans.		Contre les affections cutanées ou le prurit : Laver soigneusement les feuilles, froisser 5 à 10 grammes du matériel végétal et frictionner la zone affectée préalablement lavée avec de l’eau bouillie et du savon, 2 à 3 fois par jour, pendant 3 à 5 jours. Contre les douleurs abdominales ou les gaz : Préparer une décoction avec 30 g de feuilles fraîches dans 4 tasses (1 litre) d'eau, faire bouillir pendant 5 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3 ou 4 fois par jour pendant 1 à 3 jours. Contre les saignements (par coupure) : Laver soigneusement les feuilles, préparer un jus avec 20 à 30 grammes de feuilles froissées. Laver la lésion avec de l’eau bouillie et du savon, appliquer le jus sur la zone affectée. Couvrir avec une compresse ou un linge propre et changer toutes les 4 heures. Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.	1 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti. 2 LAGOS-WITTE S, 1988-89, 1996 Encuesta TRAMIL. Laboratorio de Histología Vegetal y Etnobotánica, Dep. de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras. 3 WENIGER B, SAVARY H, SATURNE A, 1986 Tri phytochimique relatif à 4 plantes TRAMIL. Laboratoire de chimie des substances naturelles, Faculté de médecine et de pharmacie, Université d'Etat d'Haïti, Port au Prince, Haïti. 4 WONG W, 1976 Some folk medicinal plants from Trinidad. Econom Bot 30(2):103-142. 5 HEGNAUER R, 1973 Chemotaxonomie der Pflanzen. Stuttgart, Deutschland: Birkhauser Verlag Basel, 882pp. 6 LUCIANO-MONTALVO C, GAVILLAN-SUAREZ J, BOULOGNE I, 2011 A screening for antimicrobial activities of Caribbean herbal remedies. Informe TRAMIL. Cuadernos de Investigación del Instituto de Investigaciones Interdisciplinarias de la Universidad de Puerto Rico en Cayey. Cuaderno 16. 7 BOUCOURT E, MARTINEZ MJ, MOREJON Z, 2010 Evaluación de la actividad antimicrobiana del extracto acuoso de las hojas frescas de Gossypium barbadense L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, C. Habana, Cuba. 8 CACERES A, GONZALEZ S, GIRON L, 1998 Demostracion de la actividad antimicrobiana de plantas TRAMIL en base a los usos populares en la cuenca del Caribe. Laboratorio de productos fitofarmacéuticos Farmaya y Facultad de Ciencias Químicas y Farmacia, Universidad de San Carlos, Guatemala, Guatemala. 22pp. 9 GARCIA GM, COTO MT, GONZALEZ CS, PAZOS L, 2000 Velocidad del tránsito intestinal en ratones, del extracto acuoso de hoja fresca de Gossypium barbadense. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica. 10 KERHARO J, ADAM J, 1974 La Pharmacopée Sénégalaise traditionnelle. Paris, France : Ed Vigot Frères, 1011pp. 11 GARCIA GM, COTO MT, GONZALEZ CS, PAZOS L, 1998 Toxicidad aguda del extracto acuoso de hoja fresca de Gossypium barbadense. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica. 12 GARCIA GM, COTO MT, GONZALEZ CS, OCAMPO R, PAZOS L, 2001 Irritabilidad dérmica del extracto acuoso de hoja fresca de Gossypium barbadense. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.
	Phania matricarioides (dans les territoires avec usage significatif TRAMIL) Cuba : manzanilla Usages significatifs TRAMIL feuille, décoction, en bains¹	Recommandations Préparation et posologie Références	Selon l’information disponible : L’emploi contre les maux d’estomac est classé dans la catégorie REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et de validation. Si l’état du patient se détériore, ou si les douleurs d’estomac durent plus de 3 jours, consulter un médecin. L’emploi contre les démangeaisons et les problèmes de peau est classé dans la catégorie REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et de validation. Toute application topique doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène qui empêcheront contamination ou infection surajoutée. Si l’état du patient se détériore, si les démangeaisons ou les problèmes de peau durent plus de 5 jours, consulter un médecin. Ne pas employer avec des femmes enceintes ou allaitantes, ni avec des enfants de moins de 4 ans.		Contre les maux d’estomac : Préparer une décoction avec 40 grammes de parties aériennes fraîches (30 rameaux) dans 4 tasses (1 litre) d’eau, bouillir 5 minutes en récipient couvert, laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3 fois par jour pendant 3 jours. Contre-indiqué pour les enfants de moins de 4 ans². Contre les démangeaisons ou problèmes de peau : Préparer une décoction avec 40 grammes de parties aériennes fraîches (30 rameaux) dans 4 tasses (1 litre) d'eau, faire bouillir pendant 5 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir et appliquer localement en bains pendant 20 minutes, 3-4 fois par jour². Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.	1 CARBALLO A, 1990 Encuesta TRAMIL. Centro de investigación de fitoterapia y medicina tradicional de Topes de Collantes, Trinidad, Cuba. 2 MOREJON Z, LOPEZ M, GARCIA MJ, BOUCOURT E, VICTORIA M, FUENTES V, MORON F, BOULOGNE I, ROBINEAU L, 2009 Encuesta TRAMIL preliminar a grupos de vecinos en los municipios 10 de Octubre, Lisa, Marianao, Habana del Este (Cojímar) en la Ciudad de la Habana. Laboratorio Central de Farmacología, Universidad de Ciencias Médicas de La Habana, Cuba. 3 CABRERA H, 2009 Tamizaje fitoquímico de extractos de Phania matricarioides (Spreng.) Griseb. Trabajo TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de la Habana, Cuba. 4 BOUCOURT E, MARTINEZ M J, MOREJON Z, 2010 Evaluación de la actividad antimicrobiana del extracto acuoso de las partes aéreas frescas de Phania matricarioides (Spreng.) Griseb. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de la Habana, Cuba. 5 MORON FJ, GARCIA AI, VICTORIA MC, MOREJON Z, LOPEZ M, BACALLAO Y, FUENTES V, 2009 Acción analgésica de la decocción de partes aéreas frescas de Phania matricarioides (Spreng.) Griseb. (manzanilla del país) en ratones. Trabajo TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de la Habana, Cuba. 6 FRIAS AI, CABRERA H, GARCIA N, MORON F, VICTORIA MC, GARCIA AI, MOREJON Z, ACOSTA L, 2010 Efecto antiinflamatorio tópico de la decocción de partes aéreas frescas de Phania matricarioides (Spreng.) Griseb. (manzanilla del país) en el edema de la oreja inducido por aceite de Croton en ratones. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de la Habana, Cuba. 7 FRIAS AI, GARCIA N, MOREJON Z, MORON F, VICTORIA MC, 2010 Efecto antiinflamatorio oral de la decocción de partes aéreas frescas de Phania matricarioides (Spreng.) Griseb. (manzanilla del país) en el edema de la oreja inducido por aceite de Croton en ratones. Trabajo TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de la Habana, Cuba. 8 MORON FJ, GARCIA AI, VICTORIA MC, MOREJON Z, LOPEZ M, BACALLAO Y, FUENTES V, 2009 Acción sobre el tránsito intestinal de la decocción de partes aéreas frescas de Phania matricarioides (Spreng.) Griseb. (manzanilla del país) en ratones. Trabajo TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de la Habana, Cuba. 9 LOPEZ M, MOREJON Z, BACALLAO Y, ACOSTA L, MORON F, 2010 Clases tóxicas agudas (CTA) de decocción 50% de partes aéreas frescas de Phania matricaroides Spreg. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de la Habana, Cuba. 10 LOPEZ M, MOREJON Z, BACALLAO Y, ACOSTA L, MORON F, 2010 Irritabilidad dérmica primaria de vaina verde machacada de Phania matricaroides Spreg. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de la Habana, Cuba.
	Senna alata (dans les territoires avec usage significatif TRAMIL) Vénézuéla : majagüillo République Dominicaine : guajabo Guatemala : barajo Martinique : kasyalata Tobago : wild senna Tobago : wild guava Saint-Vincent : river grava Saint-Vincent : river senna Vénézuéla : tarantantán Usages significatifs TRAMIL feuille, jus, application locale^1,2	Recommandations Préparation et posologie Références	Selon l’information disponible : L’emploi contre les affections de la peau, les taches sur la peau (Pityriasis versicolor), la teigne et les champignons (mycose interdigitale) est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, la validation et l’information scientifique publiée. Si l’état du patient se détériore, ou si les symptômes durent plus de 5 jours, consulter un médecin. Le traitement du lota (Pityriasis versicolor) doit durer 20 à 30 jours, les rechutes étant fréquentes si on ne suit pas les recommandations et les symptômes réapparaissent. Dans ce cas, consulter un médecin. Toute application topique doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène, pour éviter la contamination ou une infection supplémentaire. Ne pas employer avec des femmes enceintes ou allaitantes, ni avec des enfants de moins de 5 ans.		Contre les affections cutanées ou les boutons : Laver soigneusement 2-3 feuilles avant d’en détacher les folioles, hacher 30 grammes de folioles et les ajouter à 4 tasses (1 litre) d’eau bouillante. Laisser reposer pendant 12 heures. Laver la zone affectée 2-3 fois par jour⁴. Contre la teigne ou les champignons (mycose interdigitale) : Nettoyer la lésion à l’eau bouillie et au savon. Laver soigneusement 1 feuille avant d’en détacher les folioles, les écraser, puis appliquer 5 grammes de matière végétale sur la peau de la zone affectée. Recouvrir avec une compresse ou un linge propre et changer 3-4 fois par jour. Contre le lota (Pityriasis versicolor) : Préparer une décoction ou infusion avec 30 grammes de feuilles dans 4 tasses (1 litre) d’eau. En cas de décoction, bouillir 5 minutes dans un récipient couvert. Pour l’infusion, ajouter l’eau bouillante aux 30 grammes de feuilles et couvrir. Laisser refroidir, filtrer et laver la zone affectée 2-3 fois par jour pendant 20-30 jours. On peut également laver soigneusement 1-2 feuilles avant d’en détacher les folioles, les piler dans un mortier en ajoutant éventuellement quelques gouttes d’eau bouillie, jusqu’à en extraire le jus. Filtrer la préparation avant de réaliser les lavages de la zone affectée 2-3 fois par jour pendant 20-30 jours. Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.	1 DELENS M, 1990-92 Encuesta TRAMIL. Centro al Servicio de la Acción Popular CESAP, Caracas, Venezuela. 2 DELAIGUE J, 2005 TRAMIL survey. PRDI, Tobago House of Assembly, Scarborough, Tobago. 3 LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Asociation pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique. 4 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala. 5 BOULOGNE I, 2008 Enquête TRAMIL, Les Saintes (Terre-de-Bas), UAG, Guadeloupe (FWI). 6 CASTILLO D, RODRIGUEZ S, DE LOS SANTOS C, BELEN A, 2003 Encuesta TRAMIL (región Este). Dep. de Botánica, Jardín Botánico Nacional, Santo Domingo, República Dominicana. 7 BALLAND V, GLASGOW A, SPRINGER F, GAYMES G, 2004 TRAMIL survey. enda-caribbean, IICA, UAG & U.PARIS XI, Saint Vincent. 8 HARRISON J, GARRO C, 1977 Study on anthraquinone derivatives from Cassia alata L. (Leguminosae). Rev Per Bioquim 1(1):31-33. 9 MULCHANDANI N, HASSARAJANI S, 1975 Isolation of 1,3,8-trihydroxy-2-methylanthraquinone from Cassia alata (leaves). Phytochemistry 14:2728b. 10 HAUPTMANN H, NAZARIO L, LACERDA L, 1950 Some constituents of the leaves of Cassia alata. J Am Chem Soc 72(4):1492-1495. 11 RAO C, SUBHASHINI G, 1986 Saponins & leucoanthocyanins in Cassia L. Curr Sci 55(6):320-321. 12 SMOLENSKI S, SILINIS H, FARNSWORTH N, 1975 Alkaloid screening. Lloydia 38(3):225-255. 13 RAI M, UPADHYAY S, 1988 Screening of medicinal plants of Chindwara district against Trychophyton mentagrophytes: a causal organism of Tinea pedis. Hindustan Antibiot Bull 30(1/2):33-36. 14 FIALLO M, VAZQUEZ TINEO M, 1992 Evaluación in vitro de plantas usadas en afecciones de la piel: Extractos vegetales antimicóticos y antimicrobianos. Informe TRAMIL. CIBIMA, Fac de Ciencias, Universidad Autónoma UASD, Santo Domingo, Rep. Dominicana. 15 ACHARARIT C, PANYAYONG W, RUCHATAKOMUT E, 1983 Inhibitory action of some Thai herbs. Mahidol Univ Fac Pharm Bangkok, Thailand. 16 BENJAMIN TV, LAMIKANRA A, 1981 Investigation of Cassia alata, a plant used in Nigeria in the treatment of skin diseases. Quart J Crude Drug Res 19(2/3):93-96. 17 CACERES A, LOPEZ BR, GIRON MA, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatophytic infections. 1. Screening for antimycotic activity of 44 plant extracts. J Ethnopharmacol 31(3):263-276. 18 FUZELLIER MC, MORTIER F, LECTARD P, 1982 Activité antifongique de Cassia alata L. Ann Pharm Fr 40(4):357-363. 19 PALANICHAMY S, AMALA BHASKAR E, BAKTHAVATHSALAM R, NAGARAJAN S, 1991 Wound healing activity of Cassia alata. Fitoterapia 62(1):153-156. 20 DAMODARAN S, VENKATARAMAN S, 1994 A study on the therapeutic efficacy of Cassia alata, Linn. Leaf extract against pityriasis versicolor. J Ethnopharmacol 42(1):19-23. 21 MOKKHASMIT M, NGARMWATHANA W, SAWASDIMONGKOL K, PERMPHIPHAT U, 1971 Pharmacological evaluation of Thai medicinal plants (cont.). J Med Assoc Thai 54(7):490-504. 22 MARTINEZ MJ, MOREJON Z, LOPEZ M, BOUCOURT E, BARCELO H, LAYNEZ A, FUENTES V, MORON F, 2003 Clases Toxicidad Aguda (CTA) de hoja fresca de Senna alata (L.) Roxb. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 23 MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, FUENTES V, MORON F, 2005 Clases tóxicas agudas tópica de hoja fresca machacada de Senna alata. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 24 LOPEZ M, MARTINEZ MJ, MOREJON Z, BOUCOURT E, FERRADA C, FUENTES V, MORON F, 2005 Irritabilidad dérmica primaria de la maceración acuosa de hoja fresca de Senna alata (L.) Roxb. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 25 LOGARTO PARRA A, SILVA YHEBRA R, GUERRA SARDINAS I, IGLESIAS BUELA L, 2001 Comparative study of the assay of Artemia salina L. and the estimate of the medium lethal dose (LD50 value) in mice, to determine oral acute toxicity of plant extracts. Phytomedicine 8(5):395-400. 26 MOKKHASMIT M, SWATDIMONGKOL K, SATRAWAHA P, 1971 Study on toxicity of Thai medicinal plants. Bull Dept Med Sci 12(2-4):36-65. 27 VIZOSO A, RAMOS A, VILLAESCUSA A, BETANCOURT J, GARCIA A, PILOTO J, DECALO M, 2002 Passiflora incarnata L. y Senna alata (L.) Roxo: Estudio toxicogenético que emplea 2 sistemas de ensayos a corto plazo. Rev Cubana Plant Med 7(1):27-31.
	Senna alata (dans les territoires avec usage significatif TRAMIL) Vénézuéla : majagüillo République Dominicaine : guajabo Guatemala : barajo Martinique : kasyalata Tobago : wild senna Tobago : wild guava Saint-Vincent : river grava Saint-Vincent : river senna Vénézuéla : tarantantán Usages significatifs TRAMIL feuille, macération aqueuse, bains^1-3	Recommandations Préparation et posologie Références	Selon l’information disponible : L’emploi contre les affections de la peau, les taches sur la peau (Pityriasis versicolor), la teigne et les champignons (mycose interdigitale) est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, la validation et l’information scientifique publiée. Si l’état du patient se détériore, ou si les symptômes durent plus de 5 jours, consulter un médecin. Le traitement du lota (Pityriasis versicolor) doit durer 20 à 30 jours, les rechutes étant fréquentes si on ne suit pas les recommandations et les symptômes réapparaissent. Dans ce cas, consulter un médecin. Toute application topique doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène, pour éviter la contamination ou une infection supplémentaire. Ne pas employer avec des femmes enceintes ou allaitantes, ni avec des enfants de moins de 5 ans.		Contre les affections cutanées ou les boutons : Laver soigneusement 2-3 feuilles avant d’en détacher les folioles, hacher 30 grammes de folioles et les ajouter à 4 tasses (1 litre) d’eau bouillante. Laisser reposer pendant 12 heures. Laver la zone affectée 2-3 fois par jour⁴. Contre la teigne ou les champignons (mycose interdigitale) : Nettoyer la lésion à l’eau bouillie et au savon. Laver soigneusement 1 feuille avant d’en détacher les folioles, les écraser, puis appliquer 5 grammes de matière végétale sur la peau de la zone affectée. Recouvrir avec une compresse ou un linge propre et changer 3-4 fois par jour. Contre le lota (Pityriasis versicolor) : Préparer une décoction ou infusion avec 30 grammes de feuilles dans 4 tasses (1 litre) d’eau. En cas de décoction, bouillir 5 minutes dans un récipient couvert. Pour l’infusion, ajouter l’eau bouillante aux 30 grammes de feuilles et couvrir. Laisser refroidir, filtrer et laver la zone affectée 2-3 fois par jour pendant 20-30 jours. On peut également laver soigneusement 1-2 feuilles avant d’en détacher les folioles, les piler dans un mortier en ajoutant éventuellement quelques gouttes d’eau bouillie, jusqu’à en extraire le jus. Filtrer la préparation avant de réaliser les lavages de la zone affectée 2-3 fois par jour pendant 20-30 jours. Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.	1 DELENS M, 1990-92 Encuesta TRAMIL. Centro al Servicio de la Acción Popular CESAP, Caracas, Venezuela. 2 DELAIGUE J, 2005 TRAMIL survey. PRDI, Tobago House of Assembly, Scarborough, Tobago. 3 LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Asociation pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique. 4 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala. 5 BOULOGNE I, 2008 Enquête TRAMIL, Les Saintes (Terre-de-Bas), UAG, Guadeloupe (FWI). 6 CASTILLO D, RODRIGUEZ S, DE LOS SANTOS C, BELEN A, 2003 Encuesta TRAMIL (región Este). Dep. de Botánica, Jardín Botánico Nacional, Santo Domingo, República Dominicana. 7 BALLAND V, GLASGOW A, SPRINGER F, GAYMES G, 2004 TRAMIL survey. enda-caribbean, IICA, UAG & U.PARIS XI, Saint Vincent. 8 HARRISON J, GARRO C, 1977 Study on anthraquinone derivatives from Cassia alata L. (Leguminosae). Rev Per Bioquim 1(1):31-33. 9 MULCHANDANI N, HASSARAJANI S, 1975 Isolation of 1,3,8-trihydroxy-2-methylanthraquinone from Cassia alata (leaves). Phytochemistry 14:2728b. 10 HAUPTMANN H, NAZARIO L, LACERDA L, 1950 Some constituents of the leaves of Cassia alata. J Am Chem Soc 72(4):1492-1495. 11 RAO C, SUBHASHINI G, 1986 Saponins & leucoanthocyanins in Cassia L. Curr Sci 55(6):320-321. 12 SMOLENSKI S, SILINIS H, FARNSWORTH N, 1975 Alkaloid screening. Lloydia 38(3):225-255. 13 RAI M, UPADHYAY S, 1988 Screening of medicinal plants of Chindwara district against Trychophyton mentagrophytes: a causal organism of Tinea pedis. Hindustan Antibiot Bull 30(1/2):33-36. 14 FIALLO M, VAZQUEZ TINEO M, 1992 Evaluación in vitro de plantas usadas en afecciones de la piel: Extractos vegetales antimicóticos y antimicrobianos. Informe TRAMIL. CIBIMA, Fac de Ciencias, Universidad Autónoma UASD, Santo Domingo, Rep. Dominicana. 15 ACHARARIT C, PANYAYONG W, RUCHATAKOMUT E, 1983 Inhibitory action of some Thai herbs. Mahidol Univ Fac Pharm Bangkok, Thailand. 16 BENJAMIN TV, LAMIKANRA A, 1981 Investigation of Cassia alata, a plant used in Nigeria in the treatment of skin diseases. Quart J Crude Drug Res 19(2/3):93-96. 17 CACERES A, LOPEZ BR, GIRON MA, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatophytic infections. 1. Screening for antimycotic activity of 44 plant extracts. J Ethnopharmacol 31(3):263-276. 18 FUZELLIER MC, MORTIER F, LECTARD P, 1982 Activité antifongique de Cassia alata L. Ann Pharm Fr 40(4):357-363. 19 PALANICHAMY S, AMALA BHASKAR E, BAKTHAVATHSALAM R, NAGARAJAN S, 1991 Wound healing activity of Cassia alata. Fitoterapia 62(1):153-156. 20 DAMODARAN S, VENKATARAMAN S, 1994 A study on the therapeutic efficacy of Cassia alata, Linn. Leaf extract against pityriasis versicolor. J Ethnopharmacol 42(1):19-23. 21 MOKKHASMIT M, NGARMWATHANA W, SAWASDIMONGKOL K, PERMPHIPHAT U, 1971 Pharmacological evaluation of Thai medicinal plants (cont.). J Med Assoc Thai 54(7):490-504. 22 MARTINEZ MJ, MOREJON Z, LOPEZ M, BOUCOURT E, BARCELO H, LAYNEZ A, FUENTES V, MORON F, 2003 Clases Toxicidad Aguda (CTA) de hoja fresca de Senna alata (L.) Roxb. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 23 MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, FUENTES V, MORON F, 2005 Clases tóxicas agudas tópica de hoja fresca machacada de Senna alata. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 24 LOPEZ M, MARTINEZ MJ, MOREJON Z, BOUCOURT E, FERRADA C, FUENTES V, MORON F, 2005 Irritabilidad dérmica primaria de la maceración acuosa de hoja fresca de Senna alata (L.) Roxb. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 25 LOGARTO PARRA A, SILVA YHEBRA R, GUERRA SARDINAS I, IGLESIAS BUELA L, 2001 Comparative study of the assay of Artemia salina L. and the estimate of the medium lethal dose (LD50 value) in mice, to determine oral acute toxicity of plant extracts. Phytomedicine 8(5):395-400. 26 MOKKHASMIT M, SWATDIMONGKOL K, SATRAWAHA P, 1971 Study on toxicity of Thai medicinal plants. Bull Dept Med Sci 12(2-4):36-65. 27 VIZOSO A, RAMOS A, VILLAESCUSA A, BETANCOURT J, GARCIA A, PILOTO J, DECALO M, 2002 Passiflora incarnata L. y Senna alata (L.) Roxo: Estudio toxicogenético que emplea 2 sistemas de ensayos a corto plazo. Rev Cubana Plant Med 7(1):27-31.
	Senna bicapsularis Usages significatifs TRAMIL feuille fraîche, macération aqueuse, en bains^1-2 feuille fraîche, écrasée, application locale¹	Recommandations Préparation et posologie Références	Selon l’information disponible : L’emploi contre les affections cutanées est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité. Toute application topique doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène, pour éviter la contamination ou une infection supplémentaire. Si l’état du patient se détériore, ou si les dermatoses durent plus de 5 jours, consulter un médecin. Ne pas employer avec des femmes enceintes ou allaitantes, ni avec des enfants de moins de 7 ans.		Contre les affections cutanées : Laver soigneusement 3-5 feuilles avant de détacher les folioles, hacher 30 grammes de folioles et les ajouter à 4 tasses (1 litre) d’eau bouillante. Laisser reposer pendant 12 heures. Laver la zone affectée avec la macération 2 à 3 fois par jour. On peut également nettoyer la lésion à l’eau bouillie et au savon. Laver soigneusement 2-3 feuilles avant de détacher les folioles, les écraser, puis appliquer 5 grammes de matériel végétale sur la peau de la zone affectée. Recouvrir avec une compresse ou un linge propre et changer 3-4 fois par jour. Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.	1 LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Association pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique. 2 BOULOGNE Isabelle, 2008 Enquête TRAMIL, Les Saintes, UAG, Guadeloupe (FWI). 3 SOLÍS P, RODRÍGUEZ N, ESPINOSA A, VÁSQUEZ Y, Gupta MP, 2004 Ensayo fitoquímico de algunas especies con usos significativos TRAMIL en Martinica. Informe TRAMIL. Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá. 4 TORRENEGRA R, JIMÉNEZ R, 2002 Phytochemical studies of leaves and flowers on Senna bicapsularis (L.) Roxburgh var. bicapsularis. Actual Biol(Medellin) 24(76):69-74. 5 DR. DUKE’S PHYTOCHEMICAL AND ETHNOBOTANICAL DATABASES 2009 www.ars-grin.gov/duke/ 6 RAO CK, SUBHASHINI G, 1986 Saponins and leucoanthocyanins in Cassia L. Curr Sci 55(6):320-321. 7 BOUCOURT E, BOULOGNE I, LÓPEZ M, MARTÍNEZ MJ, MORÓN F, 2012 Recherche d’activité anti-microbienne in vitro (selon la technique de la diffusion en milieu gélosé) de la macération de la feuille lyophilisée de Senna bicapsularis (L.) Roxb. Travail TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 8 FRÍAS AI, BOULOGNE I, BACALLAO Y, MORÓN F, 2012 Activité antiinflammatoire topique de la macération aqueuse de la feuille lyophilisée de Senna bicapsularis (L.) Roxb sur l’oedème de l’oreille induite par l’huile de croton sur la souris. Travail TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de C. Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. 9 LÓPEZ M, BOULOGNE I, BACALLAO Y, MORÓN F, 2012 Recherche d’irritabilité topique sur peau saine et abîmée (selon les méthodes OECD et EPA Acute dermal irritation) de la macération de la feuille lyophilisée de Senna bicapsularis (L.) Roxb. Travail TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.
	Senna occidentalis (dans les territoires avec usage significatif TRAMIL) Dominique : café moucha République Dominicaine : brusca Guatemala : frijolillo Honduras : frijolillo Haïti : terrier rouge Usages significatifs TRAMIL feuille, pilée/pressée, application locale¹	Recommandations Préparation et posologie Références	Selon l’information disponible : L’emploi de la feuille contre les affections de la peau, les maux d’estomac, la fièvre, la jaunisse et mauvaise qualité du sang, ainsi que l’emploi de la graine contre les plaies et la teigne sont classés REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée. L’emploi de la feuille contre le mal de gorge, les maux de tête et les douleurs générales, est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité. Si l’état du patient se détériore, si la fièvre ou le mal de tête dure plus 2 jours, ou si la jaunisse ou les maux d’estomac ou de gorge durent plus de 3 jours, ou encore si l’affection cutanée, la plaie ou la teigne persiste au-delà de 5 jours, consulter un médecin. La jaunisse représentant un risque pour la santé, consulter un médecin au préalable. L’emploi de ce remède doit être considéré comme un complément du traitement médical, sauf contre-indication. Toute application locale doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène pour éviter la contamination ou une infection supplémentaire. Ne pas employer avec des femmes enceintes ou allaitantes, ni avec des enfants de moins de 3 ans.		Contre les affections de la peau, plaie ou teigne : Nettoyer la lésion à l’eau bouillie et au savon. Laver soigneusement 1 feuille avant de détacher les folioles, les écraser et les appliquer localement en quantité suffisante pour recouvrir la zone affectée. Recouvrir d’une compresse ou d’un linge propre et changer 3-4 fois par jour. Contre les douleurs générales, la fièvre ou la jaunisse : Préparer une décoction avec 30 grammes de feuilles avec 4 tasses (1 litre) d’eau, faire bouillir 5 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3 fois par jour³⁶. Contre les maux d’estomac : Préparer une décoction ou une infusion. Pour la décoction faire bouillir 10 minutes dans un récipient couvert 15 grammes de feuilles et 15 grammes de racine dans 4 tasses (1 litre) d’eau. Pour l’infusion, ajouter 4 tasses (1 litre) d’eau à 30 grammes de feuilles et récouvrir. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3 fois par jour³⁶. Contre le mal de tête : Laver soigneusement 1 ou 2 feuilles, essorer légèrement et appliquer sous forme de cataplasme sur le front ou la tête. Recouvrir avec une compresse ou un linge propre et changer 4 fois par jour. Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.	1 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana. 2 CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica. 3 LAGOS-WITTE S, 1988-89, 1996 Encuesta TRAMIL. Laboratorio de Histología Vegetal y Etnobotánica, Departamento de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras. 4 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala. 5 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti. 6 TIWARI RD, SINGH J, 1977 Anthraquinone pigments from Cassia occidentalis. Planta Med Suppl 32(4):375-377. 7 RAI PP, SHOK M, 1983 Anthraquinone glycosides from plant parts of Cassia occidentalis. Indian J Pharm Sci 45(2):87-88. 8 ANTON R, DUQUENOIS P, 1968 Contribution à l'étude chimique du Cassia occidentalis L. Annales Pharmaceutiques Françaises 26(2):673-680. 9 TIWARI RD, SINGH J, 1977 Flavonoids from the leaves of Cassia occidentalis. Phytochemistry 16(7):1107-1108. 10 MAJUMDAR SG, BASAK B, LASKAR S, 1987 Surface hydrocarbons from the leaves of some Cassia species. J Indian Chem Soc 64(4):259-260. 11 ALVES AC, 1964 Pharmacological study of the root of Cassia occidentalis. An Fac Farm Porto 24:65-119. 12 WADER GR, KUDAV NA, 1987 Chemical investigation of Cassia occidentalis Linn. with special reference to isolation of xanthones from Cassia spp. Indian J of Chemisitry 26(B7):703. 13 KUDAV NA, KULKARNI A,B 1974 Chemical investigation on Cassia occidentalis. II. Isolation of islandicin, helminthosporine, xanthonin and NMR spectral studies of cassiollin and its derivatives. Indian J Chem 12:1042-1044. 14 LAL-JAWAHAR, GUPTA-PURAN-CHANDRA, 1973 Physcion and phytosterol from the roots of Cassia occidentalis. Phytochemistry 12(5):1186. 15 GARCIA GM, COTO MT, GONZALEZ CS, OCAMPO R, PAZOS L, 2001 Tránsito intestinal en ratones, con extracto acuoso de raíz fresca de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica. 16 CACERES A, LOPEZ BR, GIRON MA, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatophytic infections. 1. Screening for antimycotic activity of 44 plant extracts. J Ethnopharmacol 31(3):263-276. 17 CACERES A, MENENDEZ H, MENDEZ E, COHOBON E, SAMAYAO BE, JAUREGUI E, PERALTA E, CARRILLO G, 1995 Antigonorrhoeal activity of plants used in Guatemala for the treatment of sexually transmitted diseases. J Ethnopharmacol 48(2):85-88. 18 PEREZ C, SUAREZ C, 1997 Antifungal activity of plant extracts against Candida albicans. Amer J Chinese Med 25(2):181-184. 19 HUSSAIN HS, DEENI YY, 1991 Plants in Kano ethomedicine; screening for antimicrobial activity and alkaloids. Int J Pharmacog 29(1):51-56. 20 SCHMEDA-HIRSCHMANN G, ROJAS DE ARIAS A, 1992 A screening method for natural products on triatomine bugs. Phytother Res 6(2):68-73. 21 TONA L, NGIMBI NP, TSAKALA M, MESIA K, CIMANGA K, ASPERS S, DE BRUYNE T, PIETERS L, TOTTE J, VLIETINCK AJ, 1999 Antimalarial activity of 20 crude extracts from nine African medicinal plants used in Kinshasa, Congo. J Ethnopharmacol 68(1/3):193-203. 22 SADIQUE J, CHANDRA T, THENMOZHI V, ELANGO V, 1987 Biochemical modes of action of Cassia occidentalis and Cardiospermum halicacabum in inflammation. J Ethnopharmacol 19(2):201-212. 23 SARAF S, DIXIT VK, TRIPATHI SC, PATNAIK GK, 1994 Antihepatotoxic activity of Cassia occidentalis. Int J Pharmacog 32(2):178-183. 24 JAFRI MA, JALIS SUBHANI M, JAVED K, SINGH S, 1999 Hepatoprotective activity of leaves of Cassia occidentalis against paracetamol and ethyl alcohol intoxication in rats. J Ethnopharmacol 66(3):355-361. 25 FENG PC, HAYNES LJ, MAGNUS KE, PLIMMER JR, SHERRAT HS, 1962 Pharmacological screening of some West Indian medicinal plants. J Pharm Pharmacol 14:556-561. 26 GARCIA GM, COTO MT, GONZALEZ CS, PAZOS L, 1998 Toxicidad sub-crónica en ratones, del extracto acuoso de hojas frescas de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica. 27 GARCIA GM, COTO MT, GONZALEZ CS, PAZOS L, 1998 Toxicidad sub-crónica en ratones, del extracto acuoso de raíz fresca de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica. 28 GONZALEZ A, ALFONSO H, 1990 Evaluación de la toxicidad dérmica de Momordica charantia L. y Cassia occidentalis L. en conejo y cobayo. Informe TRAMIL. Centro Nacional de Salud Animal, La Habana, Cuba. 29 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Estudio de irritabilidad dérmica, en piel lesionada de conejo, de hoja fresca de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica. 30 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Irritabilidad de la mucosa en conejo, de raíz fresca de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica. 31 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Irritabilidad de la mucosa en conejo, de semillas frescas de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica. 32 O'HARA P, PIERCE K, 1974 A toxic cardiomyopathy caused by Cassia occidentalis. II Biochemical studies in poisoned rabbits. Vet Pathol 11(2):110-124. 33 COLVIN BM, HARRISON LR, SANGSTER LT, GOSSER HS, 1986 Cassia occidentalis toxicosis in growing pigs. J Am Vet Med Assoc 189(4):423-426. 34 MARTINS E, MARTINS VM, RIET F, SONCINI RA, PARABONI SV, 1986 Intoxicação por Cassia occidentalis (Leguminosae) em suínos. Pesq Vet Bras 6(2):35-38. 35 BARTH AT, KOMMERS GO, SALLES MS, WOUTERS F, DE BARROS CS, 1994 Coffee senna (Senna occidentalis) poisoning in cattle in Brazil. Vet Hum Toxicol 36(6):541-545. 36 ALBORNOZ A, 1993 Medicina Tradicional Herbaria. Caracas, Venezuela: Editorial Instituto Farmacoterápico Latino S.A. p174.